細胞のチューブへの吸着を抑制、回収率をUP

住友ベークライト ステムフル®

ステムフル®は、透明性に優れたPET樹脂に低吸着処理を施した細胞回収用15 mLコニカルチューブです。
幹細胞など接着性の強い細胞の回収率を向上させます。

材質 包装
本体:PET
フタ:ポリエチレン
5/包
100/ケース
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特長・仕様

・幹細胞等の吸着性の強い細胞に大きな効果を発揮
・基材表面とポリマーを化学的に共有結合しており、 表面処理由来の溶出物を低減
・透明性に優れ、効率的な遠心分離・回収操作が可能
・放射線滅菌済み

使用可能温度:-80 ℃~40 ℃
遠心強度:4,640 G(回転時間10分、スイングローター、ゴムクッション使用)

アプリケーションデータ

F-hiSIEC™(ヒトiPS細胞由来腸管上皮細胞)回収における比較試験

ステムフル®は通常遠沈管に比べ細胞吸着による細胞ロスが少なく、F-hiSIEC™の回収率が向上した

小腸オルガノイドのシングルセル回収における比較試験

ステムフル®は一般遠沈管に比べ細胞吸着による細胞ロスが少なく、貴重な細胞の回収率向上に貢献

ヒトiPS細胞由来CD104陽性上皮細胞での比較

ステムフル®は一般チューブに比べ幹細胞を効率的に回収でき、その効果は特に無血清培地で顕著

ステムフル®の有効性(角膜内皮細胞の採取率)

吸着性の強い角膜内皮細胞でステムフル®は一般チューブに比べ細胞回収率が向上

細胞保存液セルストアを用いたヒト脂肪由来間葉系幹細胞の回収

細胞保存液セルストアWまたはセルストアSに懸濁したhAD-MSCsをステムフル®で5 ℃保存することにより、汎用遠沈管で保存するよりも細胞回収率が高値に維持された。

アプリケーション詳細

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アプリケーション名 試料
1 F-hiSIEC™(ヒトiPS細胞由来腸管上皮細胞)回収における比較試験 ヒトiPS細胞由来腸管上皮細胞
2 小腸オルガノイドのシングルセル回収における比較試験 小腸オルガノイド
3 ヒトiPS細胞由来CD104陽性上皮細胞での比較 ヒトiPS細胞由来CD104陽性上皮細胞
4 ステムフル®の有効性(角膜内皮細胞の採取率) 角膜内皮細胞
5 細胞保存液セルストアを用いたヒト脂肪由来間葉系幹細胞の回収 ヒト脂肪由来間葉系幹細胞

論文リスト

  1. Yoshioka, H., Ueta, M., Yokoo, S., Yokoi, N., Mizushima, K., Naito, Y., Kinoshita, S., Sotozono, C. : Investigative Ophthalmology & Visual Science., 66(5),6 (2025).
    doi:https://doi.org/10.1167/iovs.66.5.6
  2. Tanaka, K., Mochizuki, T., Baba, S., Kawai, S., Nakano, K., Tachibana, T., Uchimura, K., Kato, A., Miyayama, T., Yamaguchi, T., Nishihara, H., Terao, K., Kato, Y. : Scientific Reports., 15, 11403(2025).
    doi: https://doi.org/10.1038/s41598-025-95823-z
  3. Shibata, S., Endo, S., Nagai, L. A. E., Kobayashi, E. H., Oike, A., Kobayashi, N., Kitamura, A., Hori, T., Nashimoto, Y., Arima, T. : Science Advances., 10(8), eadi4819(2024).
    doi: https://doi.org/10.1126/sciadv.adi4819
  4. Takahashi, J., Sugihara, H. Y., Kato, S., Kawasaki, S., Nagata, S., Okamoto, R., Mizutani, T. : Cell Reports Methods., 4(12), 100930(2024).
    doi: https://doi.org/10.1016/j.crmeth.2024.100930
  5. Kikuchi, T., Nishimura, M., Shirakawa, C., Fujita, Y., Otoi, T. : In Vitro Cellular & Developmental Biology – Animal., 60,2, 123(2024).
    doi:https://doi.org/10.1007/s11626-024-00849-8
  6. Sirisereephap, K., Tamura, H., Lim, J.-H., Chavakis, T., Hajishengallis, G., Maekawa, T. : iScience., 27(2), 108798(2024).
    doi: https://doi.org/10.1016/j.isci.2024.108798
  7. Takahashi, J., Sugihara, H. Y., Kato, S., Nagata, S., Okamoto, R., Mizutani, T.: STAR Protocols., 4(3), 102374(2023).
    doi: https://doi.org/10.1016/j.xpro.2023.102374
  8. Zhao, D., Farnell, M. B., Kogut, M. H., Genovese, K. J., Chapkin, R. S., Davidson, L. A., Berghman, L. R., Farnell, Y. Z. : Poultry Science., 101(3), 101642(2022).
    doi: https://doi.org/10.1016/j.psj.2021.101642
  9. Iwayama, T., Iwashita, M., Miyashita, K., Sakashita, H., Matsumoto, S., Tomita, K., Bhongsatiern, P., Kitayama, T., Ikegami, K., Shimbo, T., Tamai, K., Murayama, M. A., Ogawa, S., Iwakura, Y., Yamada, S., Olson, L. E., Takedachi, M., Murakami, S. : Development., 149(19), dev201203(2022).
    doi: https://doi.org/10.1242/dev.201203
  10. Okubo, T., Hayashi, R., Kudo, Y., Ishikawa, Y., Quantock, A. J. : Protocols Exchange(2022).
    doi: dx.doi.org/10.21203/rs.3.pex-1821/v1
  11. Takahashi, J., Mizutani, T., Sugihara, H. Y., Nagata, S., Kato, S., Hiraguri, Y., Takeoka, S., Tsuchiya, M., Kuno, R., Kakinuma, S., Watanabe, M., Okamoto, R. : Cell Reports Methods., 2(11), 100337 (2022).
    doi: https://doi.org/10.1016/j.crmeth.2022.100337
  12. Fujita, Y., Nishimura, M., Watanabe Komori, N., Wada, T., Shirakawa, C., Takenawa, T., Sawamoto, O., Doi, M. : Regenerative Therapy ., 14, 95(2020).
    doi:https://doi.org/10.1016/j.reth.2019.10.004

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